• Repositorio Institucional Universidad de Pamplona
  • Trabajos de pregrado y especialización
  • Facultad de Ciencias Básicas
  • Microbiología
    • Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: http://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/3273
    Registro completo de metadatos
    Campo DC Valor Lengua/Idioma
    dc.contributor.authorCollazos Álvarez, Katleen Denniere.-
    dc.date.accessioned2022-10-01T21:43:42Z-
    dc.date.available2020-09-16-
    dc.date.available2022-10-01T21:43:42Z-
    dc.date.issued2020-
    dc.identifier.citationCollazos Álvarez, K. D. (2020). Aislamiento, caracterización y conservación de microorganismos endofíticos de seemannia sylvatica (kunth) Hanst. (Gesneriaceae) y establecimiento de cultivos celulares In Vitro [Trabajo de Grado Pregrado, Universidad de Pamplona]. Repositorio Hulago Universidad de Pamplona. http://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/3273es_CO
    dc.identifier.urihttp://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/3273-
    dc.descriptionLas plantas y los microorganismos se encuentran entre los recursos naturales con importancia en aplicaciones biotecnológicas. Los estudios realizados en algunas especies de la familia Gesneriaceae demuestran que tienen actividades biológicas prometedoras como antioxidantes, anticancerígenos, antiinflamatorios. Por tanto, este trabajo tuvo como objetivo general aislar, caracterizar y conservar microorganismos endofíticos que interactúan con Seemannia sylvatica (Kunth) Hanst (Gesneriaceae) y establecimiento de cultivos celulares in vitro. Para el aislamiento de microorganismos endofíticos se procedió a emplear dos métodos: 1) se realizaron cortes en la hoja (lámina) eliminando los bordes y la nervadura central y 2) se maceraron 2 gramos de hojas con solución PBS, en ambos métodos se emplearon 13 medios de cultivos incubando a la misma temperatura por 7 días, finalizado el tiempo se realizó caracterización morfológica. Las cepas identificadas se conservaron por ultracongelamiento y por el método Castellani, a su vez se realizaron cultivos in vitro para la obtención de callos y plántulas. Se logró el aislamiento de microorganismos siendo un total de 72 cepas, correspondiendo a 34 cepas fúngicas y 38 cepas de levaduras y bacterias, fue posible realizar la descripción macroscópica a cada cepa aislada observando que las colonias presentaron morfologías totalmente diferentes, a su vez fue posible realizar la conservación a partir de los dos métodos empleados evidenciando que ambos son efectivos para la conservación a largo plazo. De igual manera se logró la obtención de plántulas a partir de organogénesis directa empleando las hormonas ANA y BAP a diferentes concentraciones, se debe resaltar que los cultivos in vitros obtenidos fueron sometidos a diferentes procesos de limpieza y desinfección del material vegetal evidenciando que el protocolo estandarizado en este estudio fue el más efectivo, estos cultivos presentaron crecimiento a partir de la semana 14 en condiciones ambientales controladas. El proceso de callogénesis no fue efectivo debido a que las concentraciones empleadas de las hormonas 2,4-D y BAP no fueron las acertadas y se dio la presencia de contaminación en todos los tratamientos.es_CO
    dc.description.abstractPlants and microorganisms are among the important natural resources in biotechnological applications. Studies conducted in some species of the Gesneriaceae family show that they have promising biological activities as antioxidants, anticancer, anti-inflammatory. Therefore, this work had as general objective to isolate, characterize and conserve endophytic microorganisms that interact with Seemannia sylvatica (Kunth) Hanst and establishment of in vitro cell cultures. For the isolation of endophytic microorganisms, there were use two methods: 1) cuts were made in the leaf (sheet), eliminating the edges and midrib, and 2) 2 grams of leaves were macerated with PBS solution, in both methods were used 13 crop media incubating at the same temperature for 7 days, after the time, morphological characterization was performed. The identified strains were preserved by deep-freezing and by the Castellani method, at the same time in vitro cultures were performed to obtain callus and seedlings. Isolation of microorganisms was achieved, being a total of 72 strains, corresponding to 34 fungal strains and 38 strains of yeast and bacteria, it was possible to perform the macroscopic description of each isolated strain observing that the colonies presented totally different morphologies, simultaneously it was possible to do conservation with the two methods used, showing that both methods are effective for the conservation in a long-term. Likewise, it was possible to obtain seedlings from direct organogenesis using the hormones NAA and BAP at different concentrations, it should be noted that the in vitro cultures obtained were subjected to different cleaning and disinfection processes of the plant material, evidencing that the standardized protocol in this study was the most effective, these crops showed growth from week 14 under controlled environmental conditions. The callogenesis process was not effective because the concentrations of the hormones 2,4-D and BAP were not correct and the presence of contamination occurred in all the treatments.es_CO
    dc.format.extent95es_CO
    dc.format.mimetypeapplication/pdfes_CO
    dc.language.isoeses_CO
    dc.publisherUniversidad de Pamplona – Facultad de Ciencias Basicas.es_CO
    dc.subjectGesneriaceae.es_CO
    dc.subjectSeemannia Sylvatica.es_CO
    dc.subjectCallogénesis.es_CO
    dc.subjectOrganogénesis.es_CO
    dc.titleAislamiento, caracterización y conservación de microorganismos endofíticos de seemannia sylvatica (kunth) Hanst. (Gesneriaceae) y establecimiento de cultivos celulares In Vitro.es_CO
    dc.typehttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fes_CO
    dc.date.accepted2020-06-16-
    dc.relation.referencesAlmeida , V., & Pastor, S. (1999). Sinningia allagophylla (Gesneriaceae): cultivo in vitro de una planta nativa del cerrado brasileño. Revista Brasileña de Botánica, 22 (3), 381 - 384.es_CO
    dc.relation.referencesArana , F. (2003). Callogénesis y Establecimiento de suspensiones celulares en el árbol del NIM (Azadirachta Indica, A.JUSS).es_CO
    dc.relation.referencesAraujo , A., Souza, V., & Chautems, A. (2005). Gesneriaceae da Cadeia do Espinhaço de Minas Gerais, Brasil. Revista Brasil. Bot., 28(1), 109 - 135.es_CO
    dc.relation.referencesBaby, J., & Mini, P. (2011). Bioactive Compounds from Endophytes and their Potential in Pharmaceutical Effect: A Review. American Journal of Biochemistry and Molecular Biology 1(3), 291 - 309.es_CO
    dc.relation.referencesBarka , E., Vatsa, P., Sanchez, L., Gaveau-Vaillant, N., Jacquard, C., Klenk, H.-P., Clément, C., Ouhdouch, Y., & Wezeld, G. (2016). Taxonomy, Physiology, and Natural Products of Actinobacteria. Microbiology and Molecular Biology Review, Vol 8(1), 1 - 44.es_CO
    dc.relation.referencesBarragán , D., & Lesmes, A. (2009). “Comparacion de Dos Metodos de Conservación, Liofilizacion y Microsecado Sobre Tres Especies Bacterianas”: Eleccion Del Mejor Metodo. PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA, 8 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesBaskarathevan, J., Jaspers, M., Jones, E., & Ridgway, H. (2009). Evaluation Of Different Storage Methods For Rapid And Cost-Effective Preservation Of Botryosphaeria Species. New Zealand Plant Protection, 62, 234 - 237.es_CO
    dc.relation.referencesBeneduzi, A., Ambrosini, A., & Passaglia, L. (2012). Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): Their potential as antagonists and biocontrol agents. Genetics and Molecular Biology, 35, 4 (suppl), 1044 - 1051 .es_CO
    dc.relation.referencesBermeo, L. (2017). Influencia de tres métodos de conservación sobre la estabilidad y producción del hongo Pleurotus ostreatus. UNIVERSIDAD CATÓLICA DE MANIZALES, 29 - 33.es_CO
    dc.relation.referencesBologna, P., & Stancanelli, S. (2019). Influence of volume container in the production of rhizomes in Seemannia (Gesneriaceae). Ornamental Horticulture., 25(3), 287 - 292.es_CO
    dc.relation.referencesBurtt. (1963). Studies in the Gesneriaceae of the Old World. XXIV. Tentative keys to the tribes and genera. Notes Roy. Bot. Gard. Edinburgh 24, 205 - 220.es_CO
    dc.relation.referencesBurtt, B., & Wiehler., H. (1995). Classification of the family Gesneriaceae. Gesneriana 1. 1 - 4.es_CO
    dc.relation.referencesCairampoma, L., & Martel, C. (2012). Notas sobre los visitadores florales de Seemannia sylvatica (Kunth) Hanstein (Gesneriaceae). Rev. peru. biol., 19(1), 011 - 016.es_CO
    dc.relation.referencesCamargo, E., Rodrigues, L., & Araujo, A. (2011). Pollination biology and reproduction of Seemannia sylvatica (Kunth) Hanstein (Gesneriaceae) in the Serra da Bodoquena National Park, Mato Grosso do Sul. Biota Neotrop., 11(4), 125 - 130.es_CO
    dc.relation.referencesCastellanos , O., Rodríguez, A., Rodríguez, J., & Rodríguez, B. (2006). Indirect organogenesis and in vitro rooting of Paulownia elongata. e-Gnosis, 4(15), 1 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesCosta, L., Queiroz, M., Borges , A., Moraes, C., & Araújo, E. (2012). Isolation and characterization of endophytic bacteria isolated from the leaves of the common bean (Phaseolus vulgaris). Brazilian Journal of Microbiology, 1562 - 1575.es_CO
    dc.relation.referencesDas, R., Romi, W., Das, R., Sharma , H., & Thakur, D. (2018). Antimicrobial potentiality of actinobacteria isolated from two microbiologically unexplored forest ecosystems of Northeast India. BMC Microbiology 18:71, 1 - 16.es_CO
    dc.relation.referencesDhayanithy, G., Subban, K., & Chelliah, J. (2019). Diversity and biological activities of endophytic fungi associated with Catharanthus roseus. BMC Microbiology 19:22, 1 - 14.es_CO
    dc.relation.referencesEk-Ramos, M., Gomez-Flores, R., Orozco-Flores, A., Rodríguez-Padilla, C., González-Ochoa, G., & Tamez-Guerra, P. (2019). Bioactive Products From Plant-Endophytic Gram-Positive Bacteria. Front Microbiol. Vol. 10, No. 463.es_CO
    dc.relation.referencesEspinosa-Leal, C., Puente-Garza, C., & García-Lara, S. (2018). In vitro plant tissue culture: means for production of biological active compounds. Nature Public Health Emergency Collection 248(1), 1 -18.es_CO
    dc.relation.referencesEtminani, F., & Harighi, B. (2018). Isolation and Identification of Endophytic Bacteria with Plant Growth Promoting Activity and Biocontrol Potential from Wild Pistachio Trees. The Plant Pathology Journal 34(3), 208 - 217.es_CO
    dc.relation.referencesEvangelista, Z., Quiñones, E., & Rincón, G. (2017). Potencial biotecnológico de las actinobacterias aisladas de suelos de México como fuente natural de moléculas bioactivas: compuestos antimicrobianos y enzimas hidrolíticas. Temas de Ciencia y Tecnología, Vol 21 N° 63, 39 - 51.es_CO
    dc.relation.referencesFernández, C. (2005). Análisis de la diversidad de Actinomicetos asociados a raíces de Lupinus angustifolius. Trabajo de Grado. Departamento de Microbiología y genética. Universidad de Salamanca. Salamanca.es_CO
    dc.relation.referencesFiráková, S., Šturdíková, M., & Múčková, M. (2007). Bioactive secondary metabolites produced by microorganisms associated with plants. Biologia, Bratislava, 62/3, 251 - 257.es_CO
    dc.relation.referencesFrancis, I., Holsters, M., & Vereecke, D. (2010). The Gram-positive side of plant–microbe interactionse. Environmental Microbiology, 12(1), 1 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesFrank, A., Saldierna, J., & Shay, J. (2017). Review Transmission of Bacterial Endophytes. Journal Microorganisms 5(4): 70, 1 - 21.es_CO
    dc.relation.referencesFritsch, K. (1893 - 1894). Gesneriaceae. in A. Engler and K. Prantl, eds. Die Natürlichen Pflanzenfamilien IV/ 3B. W. Engelmann, Leipzig., 133 -144 (1893), 145 - 185 (1894).es_CO
    dc.relation.referencesGato, Y. (2010). "Métodos de conservación y formulación de Trichoderma harzianum Rifai". Fitosanidad vol. 14, no. 3, 189 - 195.es_CO
    dc.relation.referencesGlick, B. (2012). Plant Growth-Promoting Bacteria: Mechanisms and Applications. Hindawi Publishing Corporation Scientifica, 1 - 15.es_CO
    dc.relation.referencesGouda, S., Das, G., Sen, S., Shin, H.-S., & Patra, J. (2016). Endophytes: A Treasure House of Bioactive Compounds of Medicinal Importance . Frontiers in Microbiology. 7:1538es_CO
    dc.relation.referencesGurib-Fakim, A. (2006). Medicinal plants: Traditions of yesterday and drugs of tomorrow. Molecular Aspects of Medicine (27), 1 - 93.es_CO
    dc.relation.referencesHamayun, M., Afzal Khan, S., Ahmad, N., Tang, D.-S., Kang , S.-M., Na, C.-I., Sohn, E.-Y., Hwang, Y.-H., Shin, D.-H., Lee, B.-H., Kim, J.-G., & Lee, I.-J. (2009). Cladosporium sphaerospermum as a new plant growth-promoting endophyte from the roots of Glycine max (L.) Merr. World Journal of Microbiology a Biotechnol (25), 627 – 632.es_CO
    dc.relation.referencesHernández, D., & Loaiza, A. (2014). Selección de un método para la conservación y preservación de Actinomicetos aislados del suelo del Jardín Botánico de la Universidad Tecnológica de Pereira (Trabajo de pregrado). Universidad Tecnológica De Pereira. . Universidad Tecnológica de Pereira, Risaralda.es_CO
    dc.relation.referencesHidrin, N., Goodfellow, M., Boiron, P., Moreno, M., & Serrano, J. (2001). Los estreptomices. Actualización y revisión didáctica. Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología, 21(1), 36 - 38.es_CO
    dc.relation.referencesHinoshita, L., Araujo, A., & Goldenberg, R. (2018). Os gêneros Besleria, Codonanthe, Gloxinia, Napeanthus, Nematanthus e Seemannia (Gesneriaceae) no estado do Paraná. Rodriguésia 69(2), 631 - 647.es_CO
    dc.relation.referencesHomolka , L. (2014). Preservation of Live Cultures of Basidiomycetes - Recent Methods. Fungal Biol 118(2), 7 - 25.es_CO
    dc.relation.referencesIsaeva, O., Glushakova, A., Garbuz , S., Kachalkin , A., & Chernov, I. (2010). Endophytic yeast fungi in plant storage tissues. Biology Bulletin 37(1), 26 - 34.es_CO
    dc.relation.referencesJang, T., Park, S., Yang, J., Kima, J., Seok, J., Park, U., Choi, C. W., Lee, S. R., & Han, J. (2017). Cryopreservation and its clinical applications. INTEGR MED RES 6 , 1 - 7.es_CO
    dc.relation.referencesKandel , S., Joubert, P., & Doty, S. (2017). Bacterial Endophyte Colonization and Distribution within Plants. Microorganisms, 1 - 26.es_CO
    dc.relation.referencesKazeroonian, R., Mousavi, A., Jari, S., & Tohidfar, M. (2018). Factors Influencing in vitro Organogenesis of Chrysanthemum morifolium cv. ‘Resomee Splendid’. Iranian Journal of Biotechnology, 16(2), 1 - 8.es_CO
    dc.relation.referencesKhare, E., Mishra, J., & Arora, N. (2018). Multifaceted Interactions Between Endophytes and Plant: Developments and Prospects. Frontiers in Microbiology 9:2732., 1 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesKhunnamwong,, P., Jindamorakot,, S., & Limtong, S. (2018). Endophytic yeasts diversity in leaf tissue of rice, corn and sugarcane cultivated in Thailand assessed by a culture-dependent approach. Fungal Biology, 4 - 9.es_CO
    dc.relation.referencesLewin, G., Carlos , C., Chevrette, M., Horn, H., McDonald, B., Stankey, R., Fox, B. G., & Currie, C. (2016). Evolution and Ecology of Actinobacteria and Their Bioenergy Applications. Annu Rev Microbiol. 70, 235 – 254.es_CO
    dc.relation.referencesLi, J., Zhao, G.-Z., Huang, H.-Y., Qin, S., Zhu, W.-Y., Zhao, L.-X., Xu, L.-H., Zhang, S., Li, W.G., & Strobel, G. (2012). Isolation and characterization of culturable endophytic actinobacteria associated with Artemisia annua L. Antonie van Leeuwenhoek (2012) 101, 515 – 527es_CO
    dc.relation.referencesLichtenauer, M., Nickl, S., Hoetzenecker, K., Mangold, A., Moser, B., Zimmermann, M., Hacker, S., Niederpold, T., Mitterbauer, A., & Ankersmit, H. (2009). Phosphate Buffered Saline Containing Calcium and Magnesium Elicits Increased Secretion of Interleukin-1 Receptor Antagonist. LABMEDICINE j Volume 40 Number 5, 290 - 293.es_CO
    dc.relation.referencesLimtong, S., Kaewwichian, R., Yongmanitchai, W., & Kawasaki, H. (2014). Diversity of culturable yeasts in phylloplane of sugarcane in Thailand and their capability to produce indole-3-acetic acid. World J Microbiol Biotechnol, 1 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesLiu, H., Carvalhais, L., Crawford , M., Singh, E., Dennis, P., Pieterse, C., & Schenk , P. (2017). Inner Plant Values: Diversity, Colonization and Benefits from Endophytic Bacteria. Frontier Microbiology, 1 - 17.es_CO
    dc.relation.referencesLuo, S., Xu, T., Chen , L., Chen, J., Rao, C., Xiao, X., Wan, Y., Zeng, G., Long, F., Liu, H., & Liu, Y. (2012). Endophyte-assisted promotion of biomass production and metal-uptake of energy crop sweet sorghum by plant-growth-promoting endophyte Bacillus sp. SLS18. Appl Microbiol Biotechnol (93), 1745 – 1753.es_CO
    dc.relation.referencesMartín , R., Chong-Pérez, B., & Pérez-Alonso, N. (2015). Organogénesis in vitro en el género Digitalis. Biotecnología Vegetal Vol. 15, No. 4, 195 - 206.es_CO
    dc.relation.referencesMesquita, R., Nóbrega, M., & Araújo , W. (2016). Microbial interactions: ecology in a molecular perspective. Brazilian Journal of Microbiology , 86 - 98es_CO
    dc.relation.referencesMorffy, N., & Strader, L. (2020). Old Town Roads: routes of auxin biosynthesis across kingdoms. Current Opinion in Plant Biology, 55, 21 - 27.es_CO
    dc.relation.referencesMoscatiello , R., Baldan , B., & Navazio, L. (2013). Chapter 5 Plant Cell Suspension Cultures. Methods Mol Biol. 953, 77 - 93.es_CO
    dc.relation.referencesNair, D., & Padmavathy, S. (2014). Review Article: Impact of Endophytic Microorganisms on Plants, Environment and Humans. Hindawi Publishing Corporation, 1 - 12.es_CO
    dc.relation.referencesPadhi, L., Mohanta, Y., & Panda, S. (2013). Endophytic fungi with great promises: A Review. Journal of Advanced Pharmacy Education & Research 3(3), 152 - 170.es_CO
    dc.relation.referencesPaiva , R., & Paiva, P. (2001). Chapter 1, cultura de tecidos vegetais. Universidade Federal De Lavras, 8 - 9.es_CO
    dc.relation.referencesPanawala, L. (2017). Difference Between Cotyledon and Endosperm. Obtenido de https://www.researchgate.net/publication/316699174_Difference_Between_Cotyledon_a nd_Endospermes_CO
    dc.relation.referencesPanizo, M., Reviákina, V., Montes, W., & González , G. (2005). Mantenimiento y preservación de hongos en agua destilada y aceite mineral. Revista de la Sociedad Venezolana de Microbiología, 25, 35-40.es_CO
    dc.relation.referencesPêgo, R., Grossi, J., Honorato, P., Garde, G., & Alves, C. (2013). Leaf Cutting Propagation of Seemania sylvatica (Kunth) Hants. Pêgo, R. G., Grossi, J. A. S., Honorato, P. R., Garde, G. P., & Alves, C. M. L. (2013). Leaf Cutting Propagation Of Seemania sylvatica (Kunth) Hants. Acta Horticulturae, (1000) , 251 - 256.es_CO
    dc.relation.referencesPelaz, G. (2014). Aislamiento y estudio de la diversidad de las poblaciones de Actinobacterias presentes en muestras de compost. 8 - 10.es_CO
    dc.relation.referencesPérez, M., Armas, R., Delgado, M., & Hernández, C. (2008). Organogénesis indirecta a partir de meristemos apicales caulinares de la variedad cubana de arroz Reforma. Cultivos Tropicales, 29(1), 23 - 28.es_CO
    dc.relation.referencesPerret, M., Chautems, A., Araujo, A., & Salamin, N. (2013). Temporal and spatial origin of Gesneriaceae in the New World inferred from plastid DNA sequences. Botanical Journal of the Linnean Society, 171, 61 - 79.es_CO
    dc.relation.referencesRajamanikyam, M., Vadlapudi, V., Amanchy, R., & Upadhyayula, S. (2017). Endophytic Fungi as Novel Resources of natural Therapeutics. Biological and Applied Sciences, 1 - 26.es_CO
    dc.relation.referencesRoalson , E., Boggan, J., Skog, L., & Zimmer, E. (2005). Untangling Gloxinieae (Gesneriaceae). I. Phylogenetic Patterns and Generic Boundaries Inferred from Nuclear, Chloroplast, and Morphological Cladistic Datasets. TAXON 54(2), 389 - 410.es_CO
    dc.relation.referencesSánchez-Calvo, L., & Alvarenga-Venutolo, S. (2014). Callus formation of cell suspensions in Uncaria tomentosa (cat’s claw). Tecnología en Marcha. 28(1) , 105 - 120.es_CO
    dc.relation.referencesSantos, R., Silva, J., Costa, S., Rodrigues, A., Lôbo, R., & Figueiredo, J. (2002). Effect of 0.9% saline solution and phosphate buffer saline at different temperatures and incubation times on the morphology of goat preantral follicles. Revista Brasileña de Investigación Veterinaria y Ciencia Animal , 39 (5), 254 - 259.es_CO
    dc.relation.referencesSarmiento , Y., Hazel , A., & Cárdenas , D. (2013). Evaluation of the stability of Trichoderma sp. and Azotobacter sp. preserved by different methods. Revista Colombiana de Biotecnología, Vol. 15, Núm. 1 .es_CO
    dc.relation.referencesSerrano, L. (2015). Tema 2. cultivos in vitro. Universidad Pablo de Olavide, 1 - 10.es_CO
    dc.relation.referencesSerrano-Serrano , M., Rolland, J., Clark, J., Salamin, N., & Perret, M. (2017). Hummingbird pollination and the diversification of angiosperms: an old and successful association in Gesneriaceae. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 284(1852).es_CO
    dc.relation.referencesSilva, F., Pereira, L., & Silveira, C. (2008). Micropropagation of Alibertia edulis Rich. Brazilian Archives Of Biology And Technology., 51(6), 1103 - 1114.es_CO
    dc.relation.referencesSudha, V., Govindaraj, R., Baskar, K., Al-Dhabi, N., & Duraipandiyan, V. (2016). Properties of Endophytic Fungi. Braz. arco. biol. Technol. vol.59 , 1 - 7.es_CO
    dc.relation.referencesTadych , F., & White, F. (2017). Endophytic Microbes. ElsevierInc., 1 - 13.es_CO
    dc.relation.referencesTischler, D., Van Berkel, W. J., & Fraaije, M. W. (2019). Actinobacteria, a Source of Biocatalytic Tools. Frontiers in Microbiology, 1 - 4.es_CO
    dc.relation.referencesTofiño, M. (2017). Optimización de la producción de alcaloides en Zephyranthes carinata por medio de Organogénesis o Embriogénesis Somática in vitro. Universidad ICESI, Santiago de Cali, 20.es_CO
    dc.relation.referencesVerdan, M., & Stefanello , M. (2012). Secondary Metabolites and Biological Properties of Gesneriaceae Species. CHEMISTRY & BIODIVERSITY – Vol. 9 , 2701 - 2731.es_CO
    dc.relation.referencesVerdan, M., Ehrenfried, C., Scharf, D., Cervi, A., Salvador, M., Barison, A., & Stefanello, M. (2014). Chemical Constituents from Sinningia canescens and S. warmingii. Natural Product Communications 9(10), 1535 - 1537.es_CO
    dc.relation.referencesVerdan, M., Scharf, D., Barison, A., Salvador, M., & Stefanello, M. (2017). Further chemical constituents from Sinningia canescens and S. leucotricha (Gesneriaceae). Phytochemistry Letters 22, 205 - 209.es_CO
    dc.relation.referencesVerdan, M., Unemoto, L., Faria, R., Salvador, M., Lemos de Sá, E., Barison, A., & Stefanello, M. (2013). Leucotrichoic acid, a novel sesquiterpene from Sinningia leucotricha (Gesneriaceae). Tetrahedron Letters 54, 4735 - 4737.es_CO
    dc.relation.referencesVillanueva, F., Ávila, M., Mansilla, A., Abades, S., & Cáceres, J. (2013). Effects Of Auxins And Cytokinins On Tissue Culture Of Ahnfeltia Plicata (Hudson) Fries, 1836 (Ahnfeltiales, Rhodophyta) From Magellan Region. Anales del Instituto de la Patagonia, 41(1), 99 - 111.es_CO
    dc.relation.referencesWebb, C., & Lloyd, D. (1986). The avoidance of interference between the presentation of pollen and stigmas in angiosperms II. Herkogamy. New Zealand Journal of Botany 24:1, 163 - 178.es_CO
    dc.relation.referencesWeber, A., Clarck, J., & Möller, M. (2013). Anew Formal Classification Of Gesneriaceae. Selbyana 31(2), 68 - 94.es_CO
    dc.relation.referencesWeng , Z., Maldonado, G., Junco , R., Borrego , S., Álvarez , I., Hechavarría , Z., & Hernández , N. (2011). Pseudomonas spp. and Staphylococcus spp. of food origin and its conservation in distilled water. Rev Cubana Hig Epidemiol vol.49 no.2 Ciudad de la Habana, 191 - 201.es_CO
    dc.relation.referencesWiehler. (1983). A synopsis of the neotropical Gesneriaceae. Selbyana 6[1982], 1 - 219.es_CO
    dc.relation.referencesXifreda, C. (1996). Citas Nuevas O Críticas Para La Flora Argentina Ii: Gymnostoma Y G. Nematanthodes (Gesneriaceae). Instituto de Botánica Darwinion 34(1-4), 383 - 388.es_CO
    dc.relation.referencesXin, G., Zhang, G., Kang, J. W., Staley, J. T., & Doty, S. L. (2009). A diazotrophic, indole-3acetic acid-producing endophyte from wild cottonwood. Biology and Fertility of Soils Volume 45 (6) , 669 - 674.es_CO
    dc.relation.referencesYu, C., Reddy, A., Simmons, C., Simmons, B., Singer, S., & VanderGheynst, J. (2015). Preservation of microbial communities enriched on lignocellulose under thermophilic and high-solid conditions. Biotechnology for Biofuels 8:206, 1 - 123.es_CO
    dc.relation.referencesZinniel, D., Lambrecht, P., Harris , N., Feng, Z., Kuczmarski, D., Higley, P., Ishimaru, C. A., Arunakumari, A., Barletta, R. G., & Vidaver, A. (2002). Isolation and Characterization of Endophytic Colonizing Bacteria from Agronomic Crops and Prairie Plants. APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 2198 - 2208.es_CO
    dc.rights.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2es_CO
    dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1es_CO
    Aparece en las colecciones: Microbiología

    Ficheros en este ítem:
    Fichero Descripción Tamaño Formato  
    Collazos_2020_TG.pdfCollazos_2020_TG3,96 MBAdobe PDFVisualizar/Abrir
    Mostrar el registro sencillo del ítem


    Los ítems de DSpace están protegidos por copyright, con todos los derechos reservados, a menos que se indique lo contrario.