• Repositorio Institucional Universidad de Pamplona
  • Trabajos de pregrado y especialización
  • Facultad de Ciencias Básicas
  • Biología
    • Por favor, use este identificador para citar o enlazar este ítem: http://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/724
    Registro completo de metadatos
    Campo DC Valor Lengua/Idioma
    dc.contributor.authorVides Torres, Darío Leonardo.-
    dc.date.accessioned2022-05-12T22:51:24Z-
    dc.date.available2019-03-13-
    dc.date.available2022-05-12T22:51:24Z-
    dc.date.issued2019-
    dc.identifier.citationVides Torres, D. L. (2018). Identificación molecular de la resistencia al insecticida Lambda-Cialotrina en el mosquito Aedes Aegypti de Cúcuta Norte de Santander,Colombia [Trabajo de Grado Pregrado, Universidad de Pamplona]. Repositorio Hulago Universidad de Pamplona. http://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/724es_CO
    dc.identifier.urihttp://repositoriodspace.unipamplona.edu.co/jspui/handle/20.500.12744/724-
    dc.descriptionLas enfermedades causadas por arbovirus como Dengue, Chikungunya y Zika constituyen un problema de salud pública a nivel departamental y mundial. En Colombia en el presente año a la semana epidemiológica 13 se reportan al SIVIGILA 402 casos de Dengue, mientras que a la semana 16 se notifican 329 nuevos casos de Zika y 180 casos de Chikungunya. Para controlar el insecto vector se han utilizado diferentes alternativas, como el control biológico, manejo ambiental, insecticidas de origen biológico e insecticidas químicos. La principal estrategia para el control de Ae. aegypti es el uso de insecticidas químicos, siendo los piretroides unos de los más utilizados. Sin embargo, se reporta la resistencia del insecto a estos químicos. Esta resistencia a nivel mundial se encuentra asociada en gran medida a mutaciones en el gen del canal del sodio (resistencia knockdown (kdr)). Este trabajo pretendió caracterizar el estado de resistencia a lambda-cialotrina y la identificación de mutaciones en la región codificante del canal de sodio en poblaciones de Ae. aegypti provenientes de Cúcuta Norte de Santander. Para el estudio se colectaron formas inmaduras de Ae. aegypti de los barrios Toledo Plata, Santa Teresita, Circunvalación y Tucunaré de Cúcuta. A partir de este material en condiciones de laboratorio se obtuvieron las generaciones F0 para adultos y F1 en larvas. Se seleccionaron larvas en tercer y cuarto estadio las cuales fueron expuestas a seis concentraciones del insecticida (grado técnico 98% lambda-cialotrina), determinando la mortalidad larval 24 horas después de la exposición, siguiendo la metodología propuesta por la Organización Mundial de la Salud. En las formas adultas se realizó extracción de DNA, posteriormente se identificaron las mutaciones en el canal de sodio mediante una PCR alelo especifica (AS-PCR). Se evidenció la resistencia a la lambda-cialotrina y se identificó la presencia de las tres mutaciones en las poblaciones analizadas. Se determinó la presencia del alelo 1558C en un 100%. Sugiriendo que esta mutación este confiriendo resistencia a insecticidas diferentes a la lambda-cialotrina. Además, se observó una asociación positiva significativa del 50% entre las mutaciones V419L y V1016I y la resistencia a la lambda-cialotrina. Se concluye que el uso indiscriminado de insecticidas en la región ha conllevado al desarrollo de resistencia que ha de perdurar en el tiempo. Se recomienda, descontinuar el uso de estos insecticidas por un largo tiempo, para que los insectos vuelvan a hacerse susceptibles.es_CO
    dc.description.abstractDiseases caused by arboviruses, such as Dengue, Chikungunya, and Zika, constitute a problem for public health at on a state and national level. Currently in Colombia, as of the thirtieth epidemiological week, the SIVIGILA has reported 402 cases of Dengue, while as of the sixteenth week there have been 329 new cases of Zika and 180 cases of Chikungunya. To control insect vectors, there continues to be a consistent use of biological control, environmental manipulation, and biological and chemical insecticides. The principle strategy for the control of Ae. aegypti is the use of chemical insecticides, specifically the use of pyrethroids. Nevertheless, insect resistance to this chemical intervention has been reported. This resistance on a world scale is largely associated with mutations to the sodium channel gene (knockdown resistance (kdr)). This work aims to characterize the state of resistance to lamda-cyhalothrin and identify mutations to the coding region for sodium channels in populations of Ae. aegypti. residing in northern Cúcuta de Santander. For the study, immature Ae. aegypti were collected from the towns of Toledo Plata, Santa Teresita, Circunvalación, and Tucunaré in Cúcuta. Under laboratory conditions, the F0 adult generations and F1 larva generations were obtained. Larvae were selected in between their third and fourth developmental stage and were exposed to six concentrations of insecticides (98% lamda-cyhalothrin). Larval mortality was calculated 24 hours after exposure using methodology from World Health Organization. In adult forms DNA extraction was performed to identify sodium channel mutations using allele specific polymerase chain reaction (AS-PCR). Resistance to lamda-cyhalothrin and three sodium channel mutations were identified in the analyzed populations. The presence of allele 1558C was identified in 100% of samples suggesting that this mutation confers resistance to insecticides other than lamda-cyhalothrin. Additionally, there was a positive association to resistance to lamda-cyhalothrin in 50% of samples with V419L and V10161 mutations. We conclude that the indiscriminate use of insecticide in the region has allowed for the development of insecticide resistance that will persist over time. Based on these results, we recommend the discontinuation of insecticide use for a large period to increase insecticide susceptibility in populations.es_CO
    dc.format.extent73es_CO
    dc.format.mimetypeapplication/pdfes_CO
    dc.language.isoeses_CO
    dc.publisherUniversidad de Pamplona-Facultad de Ciencias Básicas.es_CO
    dc.subjectAedes Aegypti.es_CO
    dc.subjectResistencia a insecticidas.es_CO
    dc.subjectResistencia knockdown (kdr).es_CO
    dc.subjectGen del canal de sodio.es_CO
    dc.subjectLambda-cialotrina.es_CO
    dc.titleIdentificación molecular de la resistencia al insecticida Lambda-Cialotrina en el mosquito Aedes Aegypti de Cúcuta Norte de Santander, Colombia.es_CO
    dc.typehttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fes_CO
    dc.date.accepted2018-12-13-
    dc.relation.referencesAchudume, A. (2012). Insecticide. In A. i. InTech, Insecticides - Advances in Integrated Pest Management (pp. 1: 3-22). Nigeria: Obafemi Awolowo University.es_CO
    dc.relation.referencesAguirre-Obando, O. A., Martins, A. J., & Navarro-Silva, M. A. (2017). First report of the Phe1534Cys kdr mutation in natural populations of Aedes albopictus from Brazil. Parasites & vectors, 10(1), 160.es_CO
    dc.relation.referencesAlmazán, J. M. A., Breysse, M. M., Sáiz, C. J. C., & Rama, D. F. Electrofisiología celulares_CO
    dc.relation.referencesÁlvarez, L. C., Ponce, G., Saavedra‐Rodríguez, K., López, B., & Flores, A. E. (2015). Frequency of V1016I and F1534C mutations in the voltage‐gated sodium channel gene in Aedes aegypti in Venezuela. Pest management science, 71(6), 863-869.es_CO
    dc.relation.referencesAna María Blandón, Ángela Alarcón. (2015). Boletín Epidemiológico Semanal (BES) Instituto Nacional de Salud Dirección de Vigilancia Y Análisis de Riesgo En Salud Publica Semana Epidemiologia 51 de 2015 (20 Dic Al 26 Dic).es_CO
    dc.relation.referencesAponte, HA, Penilla, RP, Dzul-Manzanilla, F., Che-Mendoza, A., López, AD, Solís, F., ... y Rodríguez, AD (2013). El estado y los mecanismos de resistencia piretroide en Aedes aegypti del estado de Guerrero, México. Bioquímica y fisiología de plaguicidas , 107 (2), 226-234.es_CO
    dc.relation.referencesArredondo-García, J. L., Méndez-Herrera, A., & Medina-Cortina, H. (2016). Arbovirus in Latin America. Acta pediátrica de México, 37(2), 111-131.es_CO
    dc.relation.referencesArrington, LC, Edman, JD, y Scott, TW (2001). ¿Por qué las hembras de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) se alimentan preferentemente y con frecuencia de sangre humana? Diario de entomología médica, 38 (3), 411-422.es_CO
    dc.relation.referencesAtencia, M. C., de Jesús Pérez, M., Jaramillo, M. C., Caldera, S. M., Cochero, S., & Bejarano, E. E. (2016). Primer reporte de la mutación F1534C asociada con resistencia cruzada a DDT y piretroides en Aedes aegypti en Colombia. Biomédica, 36(3), 432-437.es_CO
    dc.relation.referencesAzevedo, RS, Silva, EV, Carvalho, VL, Rodrigues, SG, Neto, JP, Monteiro, HA ... Vasconcelos, P. (2009). Virus de la fiebre de Mayaro, amazonia brasileña. Enfermedades infecciosas emergentes, 15 (11), 1830-1832. https://dx.doi.org/10.3201/eid1511.090461es_CO
    dc.relation.referencesBerticat, C., Boquien, G., Raymond, M., y Chevillon, C. (2002). Los genes de resistencia a los insecticidas inducen un costo de competencia de apareamiento en los mosquitos Culex pipiens. Genetics Research, 79 (1), 41-47.es_CO
    dc.relation.referencesBhatt, S., Gething, PW, Brady, OJ, Messina, JP, Farlow, AW, Moyes, CL, ... y Myers, MF (2013). La distribución global y la carga del dengue. Nature , 496 (7446), 504.es_CO
    dc.relation.referencesBisset Lazcano, J. A., Rodríguez, M. M., San Martín, J. L., Romero, J. E., & Montoya, R. (2009). Evaluación de la resistencia a insecticidas de una cepa de Aedes aegypti de El Salvador. Revista Panamericana de Salud Pública, 26, 229-234.es_CO
    dc.relation.referencesBobadilla Utrera, M. C. (2010). Perfil de resistencia y mutación “kdr” asociada a insecticidas piretroides en Aedes aegypti (L.)(Diptera: Culicidae) de Veracruz, México (Doctoral dissertation, Universidad Autónoma de Nuevo León).es_CO
    dc.relation.referencesBoshell, J., Groot, H., Gacharna, M., Márquez, G., González, M., Gaitán, M. O., ... & Martínez, M. (1986). Dengue en Colombia. Biomédica, 6(3-4), 101-106.es_CO
    dc.relation.referencesBURBANO, DAHYANA BOLAÑOS. (2013). "DIFERENCIACIÓN GENÉTICA DE POBLACIONES COLOMBIANAS DE Aedes Aegypti (Díptera: Culicidae) Y SU GRADO DE SUSCEPTIBILIDAD A INSECTICIDAS DE USO EN SALUD PÚBLICA."es_CO
    dc.relation.referencesCÁRDENAS, R. (2008). Evaluación del estado actual de la susceptibilidad a insecticidas en los principales vectores de malaria; dengue y fiebre amarilla urbana en Norte de Santander; Colombia zona fronteriza con Venezuela e Iniciación de la red de vigilancia de la resistencia a insecticidas. Tesis de Maestría. Magíster Scientiae en Protozoología. Núcleo Universitario Rafael Rangel Universidad de los Andes ULA. 98 p.es_CO
    dc.relation.referencesCASAFE, C. D. S. A. Fertilizantes, (2010). Insecticidas y acaricidas CropLife Latinoamérica, Ciudad autónoma de Buenos Aires, Argentina, 391, 392.es_CO
    dc.relation.referencesCifuentes, L., Flores, D., Madriz, L., & Vargas, R. (2015). OXIDACIÓN ELECTROQUÍMICA DE LAMBDACIALOTRINA SOBRE ELECTRODOS DE PbO2-Bi. Química Nova, 38(8), 1009-1013.es_CO
    dc.relation.referencesCollins, FH, Mendez, MA, Rasmussen, MO, Mehaffey, PC, Besansky, NJ, y Finnerty, V. (1987). Una sonda de gen de ARN ribosomal diferencia especies miembro del complejo Anopheles gambiae. El diario americano de medicina tropical e higiene, 37(1), 37-41.es_CO
    dc.relation.referencesCortés, F. M., Gómez, S. Y., & Ocazionez, R. E. (2007). Subtipos de virus dengue serotipos 2, 3 y 4 aislados en el Departamento de Santander, Colombia. Revista Cubana de Medicina Tropical, 59(3), 0-0.es_CO
    dc.relation.referencesChaverra-Rodriguez, D., Jaramillo-Ocampo, N., & Fonseca-González, I. (2012). Selección artificial de resistencia a lambda-cialotrina en Aedes aegypti y resistencia cruzada a otros insecticidas. Revista Colombiana de Entomología, 38(1), 100-107.es_CO
    dc.relation.referencesChico Aldama, P. (2017). Ciclo de vida del Aedes aegypti y manifestaciones clínicas del dengue.es_CO
    dc.relation.referencesChristophers, S. (1960). Aedes aegypti (L.) the yellow fever mosquito: its life history, bionomics and structure. Aëdes aegypti (L.) the Yellow Fever Mosquito: its Life History, Bionomics and Structure.es_CO
    dc.relation.referencesDíaz-Nieto, L. M., Maciá, A., Perotti, M. A., & Berón, C. M. (2013). Geographical limits of the southeastern distribution of Aedes aegypti (Diptera, Culicidae) in Argentina. PLoS neglected tropical diseases, 7(1), e1963es_CO
    dc.relation.referencesDong, K., Du, Y., Rinkevich, F., Nomura, Y., Xu, P., Wang, L., ... & Zhorov, B. S. (2014). Molecular biology of insect sodium channels and pyrethroid resistance. Insect biochemistry and molecular biology, 50, 1-17. (http://dx.doi.org/10.1016/j.ibmb.2014.03.012).es_CO
    dc.relation.referencesFonseca, I., & Quiñones, M. (2005). Resistencia a insecticidas en mosquitos (Diptera: Culicidae): mecanismos, detección y vigilancia en salud pública. Rev Colomb Entomol, 31, 107-15.es_CO
    dc.relation.referencesFonseca‐González, I., Quiñones, M. L., Lenhart, A., & Brogdon, W. G. (2011). Insecticide resistance status of Aedes aegypti (L.) from Colombia. Pest management science, 67(4), 430-437.es_CO
    dc.relation.referencesGast-Galvin, A. (1961). Una década de labor del Instituto Carlos Finlay de Colombia.es_CO
    dc.relation.referencesGeorghiou, GP (1990). Visión general de la resistencia a los insecticidas. En la serie de simposios de ACS-American Chemical Society (EE . UU . ).es_CO
    dc.relation.referencesGranada, Y., Mejía-Jaramillo, AM, Strode, C., y Triana-Chavez, O. (2018). A Point Mutation V419L en el gen del canal de sodio de poblaciones naturales de Aedes aegypti está involucrado en la resistencia a la λ-cihalotrina en Colombia. Insectos , 9 (1), 23. http://www.mdpi.com/2075-4450/9/1/23/htmles_CO
    dc.relation.referencesGrisales, N., Poupardin, R., Gomez, S., Fonseca-Gonzalez, I., Ranson, H., & Lenhart, A. (2013). Temephos resistance in Aedes aegypti in Colombia compromises dengue vector control. PLoS neglected tropical diseases, 7(9), e2438es_CO
    dc.relation.referencesHamid, P. H., Prastowo, J., Ghiffari, A., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2017). Aedes aegypti resistance development to commonly used insecticides in Jakarta, Indonesia. PloS one, 12(12), e0189680. http://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0189680es_CO
    dc.relation.referencesHamid, P. H., Prastowo, J., Widyasari, A., Taubert, A., & Hermosilla, C. (2017). Knockdown resistance (kdr) of the voltage-gated sodium channel gene of Aedes aegypti population in Denpasar, Bali, Indonesia. Parasites & vectors, 10(1), 283.es_CO
    dc.relation.referencesHemingway, J., Hawkes, N. J., McCarroll, L., & Ranson, H. (2004). The molecular basis of insecticide resistance in mosquitoes. Insect biochemistry and molecular biology, 34(7), 653-665es_CO
    dc.relation.referencesHirata, K., Komagata, O., Itokawa, K., Yamamoto, A., Tomita, T., & Kasai, S. (2014). A single crossing-over event in voltage-sensitive Na+ channel genes may cause critical failure of dengue mosquito control by insecticides. PLoS neglected tropical diseases, 8(8), e3085. (http://dx.plos.org/10.1371/journal.pntd.0003085).es_CO
    dc.relation.referencesInstituto Nacional de Salud. (2014). Vectores de Dengue - Chikungunya, Estado Actual. Instituto Nacional de Salud. (2018). Boletín Epidemiológico Semana 13 y 16.es_CO
    dc.relation.referencesIRAC. (2010). Prevention and management of insecticide resistance in vectors of public health importance. Seattle, USA: Resistance management for sustainable agriculture and improved public health.es_CO
    dc.relation.referencesJuliano, S. A., & Philip Lounibos, L. (2005). Ecology of invasive mosquitoes: effects on resident species and on human health. Ecology letters, 8(5), 558-574.es_CO
    dc.relation.referencesKushwah, R. B. S., Dykes, C. L., Kapoor, N., Adak, T., & Singh, O. P. (2015). Pyrethroid-resistance and presence of two knockdown resistance (kdr) mutations, F1534C and a novel mutation T1520I, in Indian Aedes aegypti. PLoS neglected tropical diseases, 9(1), e3332. (http://dx.plos.org/10.1371/journal.pntd.0003332).es_CO
    dc.relation.referencesLi, C. X., Kaufman, P. E., Xue, R. D., Zhao, M. H., Wang, G., Yan, T., ... & Zhang, H. D. (2015). Relationship between insecticide resistance and kdr mutations in the dengue vector Aedes aegypti in Southern China. Parasites & vectors, 8(1), 325. (http://www.parasitesandvectors.com/content/8/1/325).es_CO
    dc.relation.referencesLinss, JGB, Brito, LP, García, GA, Araki, AS, Bruno, RV, Lima, JBP, ... & Martins, AJ (2014). Distribución y diseminación de las mutaciones Val1016Ile y Phe1534Cys Kdr en poblaciones naturales brasileñas de Aedes aegypti. Parásitos y vectores , 7(1), 25.es_CO
    dc.relation.referencesLounibos, L. P. (2002). Invasions by insect vectors of human disease. Annual review of entomology, 47(1), 233-266.es_CO
    dc.relation.referencesMcCall, P. J. (2007). Control of dengue vectors: tools and strategies. In Report of the Scientific Working Group meeting on Dengue, Geneva, 1-5 October 2006 (pp. 110-119).es_CO
    dc.relation.referencesMaestre-Serrano, R., Gomez-Camargo, D., Ponce-Garcia, G., & Flores, A. E. (2014). Susceptibility to insecticides Colombian Caribbean Region. Pesticide biochemistry and physiology, 116, 63-73. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0048357514001679 and resistance mechanisms in Aedes aegypti from thees_CO
    dc.relation.referencesMaestre, R., Rey, G., De Las Salas, J., Vergara, C., Santacoloma, L., & Goenaga, S. (2010). Susceptibility status of Aedes aegypti to insecticides in Atlántico (Colombia). Revista Colombiana de Entomología, 36(2), 242-248.es_CO
    dc.relation.referencesMartínez, E. (1998). Dengue y dengue hemorrágico. (Ed.), Centro de Impresiones, Universidad Nacional de Quilmeses_CO
    dc.relation.referencesMartins, AJ, Brito, LP, Linss, JGB, Rivas, GBDS, Machado, R., Bruno, RV, ... y Peixoto, AA (2013). Evidencia de duplicación de genes en el gen del canal de sodio dependiente de voltaje de Aedes aegypti. Evolución, medicina y salud pública , 2013 (1), 148-160. (http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=3868448&tool=pmcentrez&rendertype=abstract).es_CO
    dc.relation.referencesMinisterio de Salud y protección social. (2014). Lineamientos de Vigilancia En Salud Pública, Entomológica Y de Laboratorio En Transmisión Autóctona Del Virus Chikungunya En Colombia Fase II.es_CO
    dc.relation.referencesMontero, Guillermo. (2009). Biología de Aedes Aegypti. Retrieved (http://www.produccion-animal.com.ar/fauna/79-Aedes_aegypti.pdf).es_CO
    dc.relation.referencesMontilla, A. D. J., & Moreno, M. A. (2015). Implicaciones sociales y ambientales del uso del Dicloro Difenil Tricloroetano (DDT). Análisis del caso en tierras venezolanas. Ambiente y Desarrollo, 19(37), 101-114.es_CO
    dc.relation.referencesMorales, A. J. R. (2015). No era suficiente con dengue y chikungunya: llegó también Zika. Archivos de medicina, 11(2), 3.es_CO
    dc.relation.referencesMullen, G. R., & Durden, L. A. (Eds.). (2009). Medical and veterinary entomology. Academic press.es_CO
    dc.relation.referencesMurcia Ramírez, C. H. Determinación del estado de susceptibilidad a ddt y piretroides y los mecanismos de resistencia en poblaciones de Aedes aegypti (Díptera: Culicidae) de los municipios de la Mesa (Cundinamarca) y Bucaramanga (Santander) (Doctoral dissertation, Universidad Nacional de Colombia-Sede Bogotá).es_CO
    dc.relation.referencesOMS. (1992). Resistencia de los Vectores de Enfermedades a los Plaguicidas. 15º Informe del Comité de Expertos de la OMS en Biología de Vectores y Lucha Antivectorial (Serie de Informes Técnicos Nº 818). Ginebra. Suiza.es_CO
    dc.relation.referencesOrganización Mundial de la Salud (OMS). (2009). DENGUE GUIAS PARA EL DIAGNÓSTICO, TRATAMIENTO, PREVENCIÓN Y CONTROLes_CO
    dc.relation.referencesOrganización Panamericana de la Salud/Organización Mundial de la Salud. (2016). CONSIDERACIONES PROVISIONALES SOBRE LA INFECCIÓN POR EL VIRUS ZIKA EN MUJERES GESTANTESes_CO
    dc.relation.referencesOrtiz, O. G. P., & Argote, C. C. (2016). Identificación de los factores de riesgo determinantes en la transmisión del de dengue en el municipio de Cúcuta en los años 2007 a 2011. Revista Científica del Departamento de Medicina, 2(1), 7-28.es_CO
    dc.relation.referencesPadilla, J. C., Lizarazo, F. E., Murillo, O. L., Mendigaña, F. A., Pachón, E., & Vera, M. J. (2017). Epidemiología de las principales enfermedades transmitidas por vectores en Colombia, 1990-2016. Biomédica, 37, 27-40.es_CO
    dc.relation.referencesPAHO, O. (1994). Declaración de la Conferencia Interamericana sobre Sociedad, Violencia y Salud.es_CO
    dc.relation.referencesPang, SC, Chiang, LP, Tan, CH, Vythilingam, I., Lam-Phua, SG, y Ng, LC (2015). La baja eficacia de la red tratada con deltametrina contra el aedes aegypti de Singapur está asociada con la resistencia de tipo kdr. Trop Biomed , 32 , 140-150. https://umexpert.um.edu.my/file/publication/00012030_126920.pdfes_CO
    dc.relation.referencesPozzetto, B., Memmi, M., & Garraud, O. (2015). Is transfusion-transmitted dengue fever a potential public health threat?. World journal of virology, 4(2), 113. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4419115/es_CO
    dc.relation.referencesRanson, H., Claudianos, C., Ortelli, F., Abgrall, C., Hemingway, J., Sharakhova, M. V., ... & Feyereisen, R. (2002). Evolution of supergene families associated with insecticide resistance. Science, 298(5591), 179-181.es_CO
    dc.relation.referencesRaymond, M., & Rousset, F. (2004). GENEPOP (version 3.4): Population genetics software for exact tests and ecumenicism. Laboratoire de Genetique et Environment, Montpellier, France.es_CO
    dc.relation.referencesRodríguez, S., & Karmy, Q. (2011). Frecuencia de la mutación KDR ILE1, 016 en aedes aegypti (díptera: culicidae) en zonas de riesgo de dengue en México (Doctoral dissertation, Universidad Autónoma de Nuevo León).es_CO
    dc.relation.referencesSantacoloma Varón, L., Chaves Córdoba, B., & Brochero, H. L. (2010). Susceptibilidad de Aedes aegypti a DDT, deltametrina y lambdacialotrina en Colombia. Revista Panamericana de Salud Pública, 27, 66-73.es_CO
    dc.relation.referencesService, M. (2014). Medical Entomology for Students. Liverpool School of Tropical Medicine: Cambridge University Press.es_CO
    dc.relation.referencesTabachnick, W. J. (1991). Evolutionary genetics and arthropod-borne disease: the yellow fever mosquito. American Entomologist, 37(1), 14-26es_CO
    dc.relation.referencesUribarren-Berrueta, T. Dengue, fiebre Chikungunya y otros arbovirus. Recursos en virología. México (2015). Acceso: 15 de noviembre del 2015.es_CO
    dc.relation.referencesYanola, J., Somboon, P., Walton, C., Nachaiwieng, W., & Prapanthadara, L. A. (2010). A novel F1552/C1552 point mutation in the Aedes aegypti voltage-gated sodium channel gene associated with permethrin resistance. Pesticide Biochemistry and Physiology, 96(3), 127-131. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2009.10.005es_CO
    dc.relation.referencesYanola, J., Somboon, P., Walton, C., Nachaiwieng, W., Somwang, P., y Prapanthadara, LA (2011). Ensayos de alto rendimiento para la detección de la mutación F1534C en el gen del canal de sodio dependiente de la permetrina en Aedes aegypti resistente a la permetrina y la distribución de esta mutación en toda Tailandia. Tropical Medicine & International Health , 16 (4), 501-509.es_CO
    dc.relation.referencesZhang, H. W., Liu, Y., Hu, T., Zhou, R. M., Chen, J. S., Qian, D., ... & Wang, Z. Q. (2015). Knockdown resistance of Anopheles sinensis in Henan province, China. Malaria journal, 14(1), 137. (http://www.malariajournal.com/content/14/1/137). http://www.who.int/denguecontrol/mosquito/es/es_CO
    dc.rights.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2es_CO
    dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1es_CO
    Aparece en las colecciones: Biología

    Ficheros en este ítem:
    Fichero Descripción Tamaño Formato  
    Vides_2018_TG.pdfVides_2018_TG1,82 MBAdobe PDFVisualizar/Abrir
    Mostrar el registro sencillo del ítem


    Los ítems de DSpace están protegidos por copyright, con todos los derechos reservados, a menos que se indique lo contrario.